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AE-8050 牙质片层-91化工仪器网

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放大字体  缩小字体    发布日期:2019-09-03  来源:仪器信息网  作者:Mr liao  浏览次数:739
核心提示:AE-8050 牙质片层 北京荣志海达生物科技有限公司 价格:¥9800元 生产地:英国厂商性质:代理商 品牌:英国IDS型号:AE-8050 抗酒石酸酸性磷酸酶5b;骨特异性碱性磷酸酶 BAP;25-羟基维他命D(25-OH-Vi;t-D)1,25双羟基维他命D检测试剂盒;氨基端和中段骨钙素酶联免疫吸附分析试剂盒N-MID Osteocalcin ELISA;尿I型胶原C端肽酶联免疫吸附分析试剂盒Urine CrossLaps ELISA;血清I型胶原C端肽酶联免疫吸附分析试剂盒Serum Cros
AE-8050 牙质片层 北京荣志海达生物科技有限公司

价格:¥9800元

生产地:英国厂商性质:代理商

品牌:英国IDS型号:AE-8050


抗酒石酸酸性磷酸酶5b;骨特异性碱性磷酸酶 BAP;25-羟基维他命D(25-OH-Vi;t-D)1,25双羟基维他命D检测试剂盒;氨基端和中段骨钙素酶联免疫吸附分析试剂盒N-MID Osteocalcin ELISA;尿I型胶原C端肽酶联免疫吸附分析试剂盒Urine CrossLaps ELISA;血清I型胶原C端肽酶联免疫吸附分析试剂盒Serum CrossLaps ELISA;I型胶原吡啶交联终肽检测试剂盒(酶联免疫吸附法);丙氨酸氨基转移酶检测条(ALT);早早孕检测试剂;细菌性阴道病检测试剂盒(多胺法);肌红蛋白/肌酸激酶MB同工酶/肌钙蛋白I三合一快速测试板;


    北京荣志海达生物科技有限公司(简称公司)是国内专业提供骨生化标志物临床应用和科研应用的解决方案供应商。
    依托国外骨细胞领域资深专家顾问小组和国内技术服务团队,公司重点推出的临床应用服务包括骨生化指标在儿童佝偻病、骨质疏松、肿瘤骨转移、风湿性关节炎、骨关节炎、骨质健康等领域的解决方案供应;科研领域服务则涵盖骨和肿瘤相关的解决方案,包括体外骨细胞培养、骨质疏松动物模型、骨关节炎动物模型、肿瘤(前列腺癌、乳腺癌、膀胱癌等)动物模型、炎症方面模型方案等。
 此外,公司还积极引进国外专业传染病检测、呼吸道\消化道检测、营养检测的产品,现已成为英国IDS公司、西班牙Certest公司、德国Mediagnost公司,奥地利BIOMEDICA, 以色列SAVYON公司, 芬兰PHARMATEST在中国的代理商。
本着 用心服务、更多选择 的服务理念,公司积极完善知识管理和培训体系,分别在广州、上海、济南、南京、长沙等地建立了技术支持中心,以便更好地服务于客户,并协助客户提升对国际新产品和新技术的认识及应用。专业、专注,引领我们共同进步、实现快速成长!


规格:50片

产地:英国IDS

编号: AE-8050

英文名称:Dentine Slices pack of  50

产品说明:

 

失活的牙质片层用作骨重吸收培养基。这些片层以5 mm直径的牙质薄片形式提供(正常厚度为0.3 mm)。每批培养基均经过检测以确保被有功能的破骨细胞重吸收。另可提供预重吸收的样品片层以便于体外重吸收功能鉴定。

简介
牙质片层以50片一包形式供应,包装于已消毒的旋转盖封容器内。该片层通过紫外线杀菌并且只能在无菌环境(如层流柜)中打开。

储存
该产品可在室温下储存。如果容器不打开且片层保持干燥,在保质期内不会出现变质。

应用
该产品被设计利用 骨切片检测 以实现体外骨重吸收量化(1,2),在 骨切片检测 中,培养的破骨细胞在矿化的底层挖掘出真正的骨重吸收间隙。从该检测的*个表述开始,在过去的16年间(1,2),该检测已被广泛地应用于研究许多因素对骨重吸收的影响且是当今体外骨重吸收研究使用zui广泛的方法(3-8)。

骨切片检测能与从实验动物(包括小鼠、大鼠、鸡、兔和猫)的骨分离的破骨细胞同时使用。它已被广泛用于研究通过直接分离于骨或培养自骨髓培养基的人破骨细胞重吸收 (4)。

该领域当今主要优势之一是通过RANK配基的增加从外周红细胞诱导破骨细胞形成的技术的发展(9)。利用这项技术,大量功能性破骨细胞能被激活,被激活的功能性破骨细胞将在包括骨位点重吸收的在内的矿化底层挖掘出重吸收间隙。重吸收很容易被反射光显微镜方法而量化(3,4,6,8)。

参考文献
1. Boyde A, Ali N N and Jones S J (1984) Resorption of dentine by isolated osteoclasts in vitro. Br. Dent. J. 156:216-220.
2. Chambers T J, Revell P A, Fuller K and Athanasou N (1984) Resorption of bone by isolated rabbit osteoclasts. J. Cell Sci. 55:383-399.
3. Walsh C A, Beresford J N, Birch M A, Boothroyd B and Gallagher J A (1991) Application of reflected light microscopy to identify and quantitate resorption by isolated osteoclasts. J. Bone Miner. Res. 6:661-671.
4. Walsh C A, Carron J A and Gallagher J A (1996) The isolation of osteoclasts from human giant cell tumours and long-term marrow cultures. In Human Cell Culture Protocols Ed. G.E. Jones, Humana Press Inc. pp 233-262.
5. Arnett T R and Dempster D W (1987) A comparative study of disaggregated chick and rat osteoclasts in vitro: Effects of calcitonin and prostaglandins. Endocrinology 120:602-608.
6. Sato M and Grasser W (1990) Effects of bisphosphonates on isolated rat osteoclasts as examined by reflected light microscopy. J. Bone Miner. Res. 5:31-40.
7. Boyde A (1991) Pitfalls in pit measurement. Calcif. Tissue Int. 49:65-70.
8. Tamura T, Takahashi N, Akatsu T, Sasaki T, Udagawa N, Tanaka S and Suda T (1993) New resorption assay with mouse osteoclast-like multinucleated cells formed in vitro. J. Bone Miner. Res. 8:953-960.
9. Itonaga I, Sabokbar A, Neale S D, and Athanasou N A (1999) 1, 25 Dihydroxyvitamin D3 and prostaglandin E3 act directly on circulating human osteoclast precursors. Biochem. Biophys. Res. Comm. 264:590-595.

 
 
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