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首页 > 供应产品 > FluorCam台式植物多光谱荧光成像系统
FluorCam台式植物多光谱荧光成像系统
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产品: 浏览次数:734FluorCam台式植物多光谱荧光成像系统 
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最后更新: 2019-05-07 02:55
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FluorCam台式植物多光谱荧光成像系统 北京易科泰生态技术有限公司

价格:面议

生产地:捷克品牌:

型号:公司传真:010-62465844

移动电话:13671083121更新时间:2019-04-24


土壤与植物生理生态研究监测、环境气象监测、水文水质及地下水监测、水土保持研究监测、荒漠化监测、精准农业以及动物生态研究等国外先进仪器技术的引进推广和系统集成,并为生态环境实验研究和规划设计提供技术方案和分析测量。


   北京易科泰生态技术有限公司成立于2002年,是从事于生态研究监测与技术推广的高科技专业公司,主要致力于植物科学、土壤科学、动物科学、水体与藻类、及地球科学等领域国外先进科学研究监测技术的引进推广和技术研发集成,并为生态环境实验研究与监测、植物表型分析、动物呼吸代谢、土壤呼吸测量监测、藻类培养与在线监测、生态修复与生态保护等提供规划设计、技术方案与系统集成、分析测量和咨询;业务范围涵盖(生态技术)开发咨询服务、进出口,自然科学及农业科学研究与试验发展,环境监测,及医疗器械等。公司技术团队80%以上具备硕士或硕士以上学位,并与中国科学院研究生院、中科院植物研究所、中科院地理科学与资源研究所、中国农科院、中国林科院、中国环科院、中国水科院、清华大学、中国农业大学、北京林业大学、北京大学等建立了长期的技术合作交流关系。

    公司下设市场营销部、技术服务部、商务部等,并专门成立易科泰EcoLab 实验室及昌平上庄实验站、阿拉善腾格里沙漠生态监测站,Ecolab实验室拥有叶绿素荧光成像、叶绿素荧光仪、水体藻类荧光仪、EasyChem全自动化学分析仪、MicroMac1000水质在线监测系统、FMT150藻类培养与在线监测系统、RF-O2荧光光纤氧气测量监测系统、ACE土壤呼吸自动监测系统、SoilBox便携式土壤气体通量测量系统、动物呼吸测量系统、LCpro 光合作用测量仪、Hood土壤入渗仪、TRIM-PICO土壤水分测量仪、年轮分析仪等各种仪器设备,可以进行实验研究分析、实验培训等,欢迎与易科泰Ecolab实验室开展合作研究。

   易科泰生态技术公司与欧洲PSI公司、ADC公司、Pyro-Science公司、Systea公司、Loligo公司、Atomtrace公司、ITRAX公司、UGT公司、Pessl公司等,及北美Sable公司、Bartz公司、VERIS公司、Regent公司等国际著名生态仪器技术领域的研发机构和厂商建立了密切的合作关系。公司代理和自主研发的FluorCam叶绿素荧光成像技术、SoilTron 多功能小型蒸渗仪技术、德国UGT土壤侵蚀监测技术、土壤/湿地呼吸与碳通量研究监测、BTC -100微根窗根系监测技术、PlantScreen植物表型成像分析技术(for high-through pant phenotyping)、光合作用与植物生理生态研究监测、Sable动物呼吸代谢测量、Promethion动物呼吸代谢与行为观测系统(for experiment animal phenotyping)、水质分析与藻类研究监测等生态仪器技术及其集成系统,成为我国农业、林业、水资源管理、生态环境研究等领域科技进步的有力工具。

    工欲善其事,必先利其器 ,易科泰公司将秉承 利其器,善其事 的经营理念,为国内生态环境研究监测领域的同行提供Z优的生态技术方案。

易科泰十大重点产品:

EcoDrone无人机遥测技术
Sable动物呼吸代谢测量技术
FluorCam叶绿素荧光成像技术
BTC-100微根窗根系动态监测技术
PlantScreen 植物表型成像分析技术
Sci-Trace LIBS元素分析技术及其应用
PSI藻类培养与叶绿素荧光在线监测技术
Promethion动物行为与能量代谢监测系统
智能LED光源与FytoScope智能LED光源培养室
CoreScanner芯体密度X光扫描成像与XRF元素分析

欢迎关注北京易科泰微信公众号


PSI公司首席科学家Nedbal教授与公司总裁Trtilek博士等首次将PAM叶绿素荧光技术与CCD技术结合在一起,于1996年在世界上成功研制生产出FluorCam叶绿素荧光成像系统(Heck等,1999;Nedbal等,2000;Govindjee and Nedbal, 2000)。FluorCam叶绿素荧光成像技术成为上世纪90年代叶绿素荧光技术的重要突破,使科学家们对光合作用与叶绿素荧光的研究一下子进入二维世界和显微世界。目前PSI公司已成为世界上最权威、使用最广、种类最全面、发表论文最多的叶绿素荧光成像专业生产厂商。

 

上左图为上世纪90年代Nedbal等设计的FluorCam叶绿素荧光成像技术(Photosynthesis Research, 66: 3-12, 2000),右图为柠檬彩色图及叶绿素荧光成像图(Photosynthetica, 38: 571-579, 2000)

FluorCam台式植物多光谱荧光成像系统是一款高度集成、高度创新、使用方便、应用广泛的高端植物活体成像技术设备,高灵敏度CCD镜头、4个固定的LED光源板及控制系统等集成于一个暗适应操作箱内(还可根据需求选配第五个光源板置于顶部),植物样品放置在暗适应操作箱内的隔板上,隔板7级高度可调;光源由高稳定性供电单元提供电源,4个高能、高稳定性LED光源板均一性照在植物样品上,成像面积可达13 13 cm;控制系统通过USB与计算机相联,并通过FluorCam软件程序控制和采集分析数据。适用于植物叶片及果实等其它植物组织、整株植物或培养的多株植物、苔藓地衣等低等植物、藻类等,FluorCam台式植物多光谱荧光成像系统广泛应用于植物包括藻类光合生理生态、植物逆境胁迫生理与易感性、气孔功能、植物环境如土壤重金属污染响应与生物检测、植物抗性检测与筛选、作物育种、Phenotyping等研究。

 

主要功能特点:

 系统集成于暗适应操作箱内,操作简便、便于移动,既可在实验室内也可在室外进行暗适应成像测量分析

 高灵敏度CCD镜头,时间分辨率达50张每秒,快速捕捉叶绿素荧光瞬变,成像面积达13x13cm

 是世界上独一可进行OJIP快速荧光动力学成像分析的高端叶绿素荧光技术设备,可得到OJIP快速叶绿素荧光动态曲线及Mo(OJIP曲线初始斜率)、OJIP固定面积、Sm(对关闭所有光反应中心所需能量的量度)、QY、PI(Performance Index)等20多个参数

 

 是世界上独一可进行QA再氧化动力学成像分析的高端叶绿素荧光技术设备,可运行单周转饱和光闪(STF)叶绿素荧光诱导动态,光强在100 s内可达到120,000 mol(photons)/m .s

 具备功能最全的、可编辑的叶绿素荧光实验程序(Protocols),包括快照模式、Fv/Fm、Kautsky诱导效应、2个叶绿素荧光淬灭分析(NPQ)protocolas(2套定制给光方案)、LC光响应曲线、PAR吸收与NDVI成像分析、QA再氧化动力学分析(选配)、OJIP快速荧光动力学分析(选配)及GFP绿色荧光蛋白成像(选配)等

 可进行自动重复成像测量分析,预设一个实验程序(Protocols)、测量次数及间隔,系统将自动循环运行成像测量,并自动将数据按时间日期存入计算机(带时间戳);还可预设两个实验程序(Protocols);比如使系统白天自动运行Fv/Fm,夜间自动运行NPQ分析等

 具备双色光化学光激发光源,标准配置为红色和白色,可选配红色与蓝色等双波段光化学光,双色光化学光可按不同比例搭配使用,以便实验不同光质对作物/植物的光合效益

左图A为100%红色光源条件下黄瓜叶片的Fv/Fm,左图B为30%蓝色光源条件下黄瓜叶片的Fv/Fm;右上图为光合作用强度随光照强度(不同比例蓝色光)的关系,右下图为气孔导度随光照强度(不同比例蓝色光)的关系

 可运行叶绿素荧光成像、多光谱荧光成像、GFP稳态荧光成像

 可选配TetraCam彩色成像模块,最大成像面积20x25cm,用于叶片或植物形态成像分析和叶绿素荧光成像对比分析

 可选配高光谱成像单元和红外热成像单元,植物性状数字化、可视化,全面测量分析植物形态、光合效率、生化性状、气孔导度、胁迫与抗性等

 可选配大型版移动式植物成像分析系统,成像面积35x35cm,可运行叶绿素荧光成像、红外热成像及RGB成像分析

 

新应用案例:

Hendrik Kupper与Zuzana Benedikty等,在2019年2月出版的《Plant Physiology》,发表了Analysis of OJIP Chlorophyll Fluorescence Kinetics and QA Reoxidation Kinetics by Direct Fast Imaging,该研究首次采用超高速成像传感器FluorCam台式植物叶绿素荧光成像系统与FKM多光谱显微荧光成像系统,成像速度可达4000fps@640x512,QA再氧化叶绿素荧光动力学成像测量单脉冲饱和光闪达150,000 mol/m2.s1。

 

 

附:OJIP快速荧光动力学测定分析参数包括:

a) Fo:初始荧光或称最小荧光,50 s时的荧光

b) Fj:2ms时的荧光

c) Fi:60ms时的荧光

d) P或Fm:最大荧光

e) Vj=(Fj-Fo)/(Fm-Fo):j阶荧光相对变量

f) Vi=(Fi-Fo)/(Fm-Fo):i阶荧光相对变量

g) Mo=TRo/RC-ETo/RC=4(F300-Fo)/(Fm-Fo):荧光瞬变初始斜率,或称OJIP曲线初始斜率

h) Area:OJIP曲线与Fm之间的面积,可称为补偿面积(complementary area)为了对不同样品进行比较,Area需要标准化为:Sm=Area/(Fm-Fo),Sm是对关闭所有光反应中心所需能量的量度

i) Fix Area:OJIP固定面积,OJIP曲线40微妙时的F值至1秒时的F值下面的面积

j) Sm:标准化OJIP补偿面积,反映QA还原多次周转

k) Ss=Vj/Mo:标准化OJ相补偿面积,反映单周转QA还原

l) N=Sm/Ss=Sm Mo(1/Vj):OJIP QA还原周转数量(between 0 and tFm)

m) Phi_Po=QY= po=TRo/ABS=Fv/Fm,最大光量子产量,吸收光量子通量反应中心初始捕获比率

n) Psi_o= o=ETo/TRo=1-Vj,捕获光量子通量中电子传递光量子通量比率

o) Phi_Eo= Eo=ETo/ABS=(1-(Fo/Fm))(1-Vj),吸收光量子通量中电子传递光量子通量比率,或称电子传递光量子产量(quantum yield of electron transport at t=0)

p) Phi_Do= Do=1- po=Fo/Fm,能量散失光量子产量(t=0)

q) Phi_pav= pav= po(Sm/tFm),平均光量子产量,tFm为达到Fm所需时间(ms)

r) ABS/RC=Mo(1/Vj)(1/QY):为单位反应中心的吸收光量子通量,这儿的反应中心仅指the active (QA to QA reducing) centers(下同)。QY=TRo/ABS=Fv/Fm

s) TRo/RC=Mo(1/Vj):单位反应中心初始(或称最大)捕获光量子通量(导致QA的还原,也即反应中心关闭比率B的增加)

t) ETo/RC=Mo(1/Vj)(1-Vj):单位反应中心初始电子传递光量子通量

u) DIo/RC=(ABS/RC)-(TRo/RC):单位反应中心能量散失

v) ABS/CS:单位样品截面的吸收光量子通量,CS stands for the excited cross-section of the tested sample(下同)。ABS/CSo=Fo,ABS/CSm=Fm,TRo/CSx=QY(ABS/CSx) 单位截面捕获能量或光量子通量

w) TRo/CSo=QY.Fo;ETo/CSo= Eo.Fo =QY.(1-Vj).Fo

x) RC/CSx:反应中心密度,RC / CS0 (active RCs per excited cross-section)

y) PIABS=(RC/ABS)( po/ Do)( o/Vj):基于吸收光量子通量的 性能 指数或称生存指数

z) PIcs=(RC/CSx)( po/ Do)( o/Vj):基于截面的 性能 指数或称生存指数                     

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